Антибактериальные свойства хемокина CXCL9

DOI: https://doi.org/10.29296/25877305-2022-03-09
Номер журнала: 
3
Год издания: 
2022

А.З. Биджиев(1), Л.А. Краева(1, 2), доктор медицинских наук, О.А. Бургасова(3, 4), доктор
медицинских наук (1)Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера,
Санкт-Петербург (2)Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова, Санкт-Петербург (3)Российский университет
дружбы народов, Москва (4)Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.
Гамалеи, Москва E-mail: olgaburgasova@mail.ru

В последние годы наблюдается небывалый рост резистентности штаммов бактерий к антибактериальным препаратам. В мире регистрируются миллионы смертей в год, связанные с распространением антибиотикорезистентных штаммов. Однако в организме человека существует малоизученная естественная система противодействия микроорганизмам – хемокины. Цель работы – исследование антибактериальных свойств хемокина CXCL9. В результате проведенного исследования выявлено антибактериальное действие хемокина CXCL9 по отношению к клинически значимым видам бактерий (Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Corynebacterium diphtheriae, Listeria monocytogenes). Бактерицидный устойчивый эффект в отношении бактерий Listeria monocytogenes отмечен в течение 7 ч после контакта с хемокином CXCL9. Полученные результаты продемонстрировали наличие антибактериальных свойств у хемокина CXCL9 по отношению к целому ряду микроорганизмов с различным строением клеточной стенки.
Ключевые слова: 
хемокин CXCL9
антибактериальная активность
антибиотикорезистентность
Для цитирования
А.З. Биджиев, Л.А. Краева, О.А. Бургасова Антибактериальные свойства хемокина CXCL9 . Врач, 2022; (3): 47-50 https://doi.org/10.29296/25877305-2022-03-09

Список литературы: 
  1. Naveed M., Chaudhry Z., Bukhari S. A. et al. Antibiotics resistance mechanism. In: Antibiotics and Antimicrobial Resistance Genes in the Environment. Elsevier, 2020; р. 292–312.
  2. Zlotnik A. Perspective: Insights on the Nomenclature of Cytokines and Chemokines. Front Immunol. 2020; 11: 908. DOI: 10.3389/fimmu.2020.00908
  3. Murphy P.M., Baggiolini M., Charo I.F. et al. International union of pharmacology. XXII. Nomenclature for chemokine receptors. Pharmacol Rev. 2000; 52 (1): 145–76.
  4. Chensue S.W. Molecular machinations: chemokine signals in host-pathogen interactions. Clin Microbiol Rev. 2001; 14 (4): 821–35. DOI: 10.1128/CMR.14.4.821-835.2001
  5. Mehrad B., Keane M.P., Strieter R.M. Chemokines as mediators of angiogenesis. Thromb Haemost. 2007; 97 (5): 755–62.
  6. Raman D., Baugher P.J., Thu Y.M. et al. Role of chemokines in tumor growth. Cancer Lett. 2007; 256 (2): 137–65. DOI: 10.1016/j.canlet.2007.05.013
  7. Crawford M.A., Burdick M.D., Glomski I.J. et al. Interferon-inducible CXC chemokines directly contribute to host defense against inhalational anthrax in a murine model of infection. PLoS Pathog. 2010; 6 (11): e1001199. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001199 Egesten A., Eliasson M., Johansson H.M. et al. The CXC chemokine MIG/CXCL9 is important in innate immunity against Streptococcus pyogenes. J Infect Dis. 2007; 195 (5): 684–93. DOI: 10.1086/510857
  8. Balogh E.P., Faludi I., Virók D.P. et al. Chlamydophila pneumoniae induces production of the defensin-like MIG/CXCL9, which has in vitro antichlamydial activity. Int J Med Microbiol. 2011; 301 (3): 252–9. DOI: 10.1016/j.ijmm.2010.08.020
  9. Crawford M.A., Fisher D.J., Leung L.M. et al. CXC Chemokines Exhibit Bactericidal Activity against Multidrug-Resistant Gram-Negative Pathogens. mBio. 2017; 8 (6): e01549-17. DOI: 10.1128/mBio.01549-17
  10. Yung S.C., Murphy P.M. Antimicrobial chemokines. Front Immunol. 2012; 3: 276. DOI: 10.3389/fimmu.2012.00276
  11. Crawford M.A., Margulieux K.R., Singh A. et al. Mechanistic insights and therapeutic opportunities of antimicrobial chemokines. Semin Cell Dev Biol. 2019; 88: 119–28. DOI: 10.1016/j.semcdb.2018.02.003
  12. Söbirk S.K., Mörgelin M., Egesten A. et al. Human chemokines as antimicrobial peptides with direct parasiticidal effect on Leishmania mexicana in vitro. PLoS One. 2013; 8 (3): e58129. DOI: 10.1371/journal.pone.0058129
  13. Cole A.M., Ganz T., Liese A.M. et al. Cutting edge: IFN-inducible ELR-CXC chemokines display defensin-like antimicrobial activity. J Immunol. 2001; 167 (2): 623–7. DOI: 10.4049/jimmunol.167.2.623
  14. Yang D., Chen Q., Hoover D.M. et al. Many chemokines including CCL20/MIP-3alpha display antimicrobial activity. J Leukoc Biol. 2003; 74 (3): 448–55. DOI: 10.1189/jlb.0103024
  15. Frick I.M., Nordin S.L., Baumgarten M. et al. Constitutive and inflammation-dependent antimicrobial peptides produced by epithelium are differentially processed and inactivated by the commensal Finegoldia magna and the pathogen Streptococcus pyogenes. J Immunol. 2011; 187 (8): 4300–9. DOI: 10.4049/jimmunol.1004179
  16. Burkhardt A.M., Tai K.P., Flores-Guiterrez J.P. et al. CXCL17 is a mucosal chemokine elevated in idiopathic pulmonary fibrosis that exhibits broad antimicrobial activity. J Immunol. 2012; 188 (12): 6399–406. DOI: 10.4049/jimmunol.1102903
  17. Linge H.M., Collin M., Nordenfelt P. et al. The human CXC chemokine granulocyte chemotactic protein 2 (GCP-2)/CXCL6 possesses membrane-disrupting properties and is antibacterial. Antimicrob Agents Chemother. 2008; 52 (7): 2599–607. DOI: 10.1128/AAC.00028-08
  18. Kotarsky K., Sitnik K.M., Stenstad H. et al. A novel role for constitutively expressed epithelial-derived chemokines as antibacterial peptides in the intestinal mucosa. Mucosal Immunol. 2010; 3 (1): 40–8. DOI: 10.1038/mi.2009.115