Преждевременные роды. Роль инфекции

DOI: https://doi.org/10.29296/25877305-2021-01-13
Скачать статью в PDF
Номер журнала: 
1
Год издания: 
2021

Р.И. Шалина, доктор медицинских наук, профессор, Д.С. Спиридонов, кандидат медицинских наук,
Е.Р. Плеханова, кандидат медицинских наук, Л.Е. Бреусенко, кандидат медицинских наук, Я.С. Борисов
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова, Москва E-mail:
spiridonov_ds@rsmu.ru

В последние годы опубликованы результаты ряда исследований, посвященных проблеме преждевременных родов (ПР), что в целом должно было снизить их частоту. Несмотря на это, значимое место в структуре причин ПР занимают инфекционные факторы. Целью данной работы явилось определение роли инфекции в структуре причин ПР. Проведен ретроспективный анализ течения беременности, родов, осложнений у детей на I этапе выхаживания у 276 пациенток со сроком беременности от 22,0 до 34,6 нед. Особое место уделено разным методам подтверждения роли инфекционных факторов и его влияния на организм матери и плода. При поступлении в стационар пациенткам проводилась оценка флоры влагалища и цервикального канала бактериоскопическим, культуральным методами, а также определялось содержание нормо- и условно-патогенной биоты методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) (качественный метод). Для выявления инфекции в генезе экстремально ранних ПР у 196 (71,0%) новорожденных от 22,0 до 27,8 нед изучался бактериальный спектр флоры (забор материала из зева, ануса; посев крови), проводилось морфологическое исследование плацент. При ПР, осложненных преждевременным излитием околоплодных вод, выявлена высокая частота (88,7%) внутриутробной инфекции у плодов и наличие признаков воспаления (92,3%) при патологоанатомическом исследовании. По данным анализа инфекционного фактора у 81,6% новорожденных определялась условно-патогенная (58,8%) и патогенная (41,2%) флора. При этом только у 36,0% отмечено соответствие между выявленной флорой у матерей и детей. В то же время при отсутствии патологической флоры и клинических симптомов инфекции у матери 22,6% детей родились с внутриутробной инфекцией. Обращало на себя внимание, что среди пациенток с начавшимися ПР в 91,2% отсутствовали лактобациллы, обладающие антимикробной защитой, в то время как в норме в микробиоте влагалища их количество должно, напротив, достигать 80,0%. Основываясь на полученных данных, показано, что для объективизации инфекционного фактора в генезе ПР необходимо внедрение нового метода определения содержания конкретных представителей нормо- и условно-патогенной биоты – ПЦР (с детекцией в режиме реального времени). В комплекс лечения ПР наряду с антибиотиками следует включать пробиотики.
Ключевые слова: 
акушерство и гинекология
преждевременные роды
преждевременное излитие околоплодных вод
внутриутробная инфекция
хориоамнионит
бактериальные биопленки
пробиотики
Для цитирования
Р.И. Шалина, Д.С. Спиридонов, Е.Р. Плеханова, Л.Е. Бреусенко, Я.С. Борисов Преждевременные роды. Роль инфекции . Врач, 2021; (1): 62-69 https://doi.org/10.29296/25877305-2021-01-13

It appears your Web browser is not configured to display PDF files. Download adobe Acrobat или click here to download the PDF file.

Список литературы: 
  1. Шалина Р.И., Спиридонов Д.С., Латышкевич О.А. и др. Спонтанные и индуцированные экстремально ранние преждевременные роды: исходы для детей. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2018; 17 (2); 54–62 [Shalina R., Spiridonov D., Latyshkevich O. et al. Spontaneous and induced extremely preterm birth: outcomes for children. Voprosy ginekologii, akusherstva i perinatologii. 2018; 17 (2); 54–62 (in Russ.)]. DOI: 10.20953/1726-1678-2018-2-54-61
  2. Romero R., Dey S., Fisher S. Preterm labor: one syndrome, many causes. Science. 2014; 345 (6198): 760–5. DOI: 10.1126/science.1251816
  3. Ходжаева З.С., Гусейнова Г.Э., Горина К.А. Преждевременные роды: актуальные вопросы акушерского менеджмента. Медицинский оппонент. 2018; 2: 70–6 [Khodzhaeva Z., Guseynova G., Gorina K. Preterm labor: current problems of obstetrics management. Medical opponent. 2018; 2: 70–6 (in Russ.)].
  4. Караулов А.В., Афанасьев М.С., Несвижский Ю.В. и др. Микробные патогены при урогенитальной инфекции беременных. Журн микробиол, эпидемиол и иммунобиол. 2019; 6: 13–20 [Karaulov A., Afanasiev M., Nesvizhsky Yu. et al. Microbial pathogens in urogenital infection in pregnant women. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2019; 6: 13–20 (in Russ.)]. DOI: 10.36233/0372-9311-2019-6-13-20
  5. Михалев С.А., Бабиченко И.И., Шахпазян Н.К. и др. Роль урогенитальной инфекции в развитии спонтанных преждевременных родов. Проблемы репродукции. 2019; 25 (2): 93–9 [Mikhalev S., Babichenko I., Shakhpazyan N. et al. Role of urogenital infection in the development of preterm delivery. Problemy reproduktsii. 2019; 25 (2): 93–9 (in Russ)]. DOI: 10.17116/repro20192502193
  6. Di. Paola M., Sani C., Clemente A.M. et al. Characterization of cervico-vaginal microbiota in women developing persistent high-risk human papillomavirus infection. Sci Rep. 2017; 7 (1): 10200. DOI: 10.1038/s41598-017-09842-6
  7. Campisciano G., Gheit T., De Seta F. et al. Oncogenic virome benefits from the different vaginal microbiome-immune axes. Microorganisms. 2019; 7 (10): 414. DOI: 10.3390/microorganisms7100414
  8. Айламазян Э.К., Шипицына Е.В., Савичева А.М. Микробиота женщины и исходы беременности. Журнал акушерства и женских болезней. 2016; 65 (4): 6–14 [Ailamazian E., Shipitsyna E., Savicheva A. Woman’s microbiota and pregnancy outcomes. Zhurnal akusherstva i zhenskih bolezney. 2016; 65 (4): 6–14 (in Russ.)]. DOI: 10.17816/JOWD6546-14
  9. Баранов И.И., Нестерова Л.А., Тумбинская Л.В. Комплексный подход в коррекции экзогенных и эндогенных нарушений микрофлоры влагалища. Opinion Leader. 2018; 1 (2): 54–9 [Baranov I., Nesterova L., Tumbinskaya L. Kompleksnyj podhod v korrekcii jekzogennyh i jendogennyh narushenij mikroflory vlagalishha. Opinion Leader. 2018; 1 (2): 54–9 (in Russ.)].
  10. Royce R.A., Jackson T.P., Thorp J.M. et al. Race/ethnicity, vaginal flora patterns, and pH during pregnancy. Sex Transm Dis. 1999; 26 (2): 96–102. DOI: 10.1097/00007435-199902000-00007
  11. Доброхотова Ю.Э., Боровкова Е.И., Хертек С.Е. и др. Бактериальный вагиноз в первом триместре беременности: микробиологические и иммунологические показатели в оценке эффективности терапии. Акушерство и гинекология. 2020; 6: 98–104 [Dobrokhotova Yu., Borovkova E., Hertek S. et al. Bacterial vaginosis in the first trimester of pregnancy: microbiological and immunological indicators in the evaluation of therapy efficiency. Obstetrics and gynecology. 2020; 6: 98–104 (in Russ.)]. DOI: 10.18565/aig.2020.6.98-104
  12. Адаскевич В.П. Инфекции, передаваемые половым путем. М.: Медицинская книга, 2001; c. 414 [Adaskevich V. Infekcii, peredavaemye polovym putjom. M.: Medicinskaja kniga, 2001; p. 414 (in Russ.)].
  13. Hillier S.L., Krohn M.A., Rabe L.K. et al. The normal vaginal flora, H2O2-producing lactobacilli, and bacterial vaginosis in pregnant women. Clin Infect Dis. 1993; 16 (S4): S273–81. DOI: 10.1093/clinids/16.supplement_4.s273
  14. Ravel J., Gajer P., Abdo Z. et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci USA. 2011; 108 (S1): 4680–7. DOI: 10.1073/pnas.1002611107
  15. De Seta F., Campisciano G., Zanotta N. et al. The vaginal community state types microbiome-immune network as key factor for bacterial vaginosis and aerobic vaginitis. Front Microbiol. 2019; 10: 2451. DOI: 10.3389/fmicb.2019.02451
  16. Parolin C., Marangoni A., Laghi L. et al. Isolation of vaginal lactobacilli and characterization of anti-candida activity. PLoS One. 2015; 10 (6): e0131220. DOI: 10.1371/journal.pone.0131220
  17. Хрянин А.А., Кнорринг Г.Ю. Современные представления о биопленках микроорганизмов. Фарматека. 2020; 27 (6): 34–42 [Khryanin A., Knorring G. Modern concepts of microbial biofilms. Pharmateca. 2020; 27 (6): 34–42 (in Russ.)]. DOI: 10.18565/pharmateca.2020.6.34–42
  18. Кнорринг Г.Ю., Стернин Ю.И., Минаев С.В. и др. Интенсификация антибактериальной терапии при гнойно-воспалительных заболеваниях. Военно-медицинский журнал. 2008; 329 (10): 35–41 [Knorring G., Sternin Yu., Minaev S. et al. Intensification of antibiotic therapy for purulent-inflammatory diseases. Voenno-meditsinskiy zhurnal. 2008; 329 (10): 35–41 (in Russ.)].
  19. Gristina A.G. Biofilms and chronic bacterial infections. Clin Microbiol Newslett. 1994; 16 (22): 171–6. DOI: 10.1016/0196-4399(94)90037-X
  20. Romero R., Kusanovic J., Espinoza J. et al. What is amniotic fluid ‘sludge’? ISUOG. 2007; 30: 793–8. DOI: 10.1002/uog.5173
  21. Steel J.H., Malatos S., Kennea N. et al. Bacteria and inflammatory cells in fetal membranes do not always cause preterm labor. Pediatr Res. 2005; 57: 404–11.
  22. Fortner K.B., Grotegut C.A., Ransom C.E. et al. Bacteria localization and chorion thinning among preterm premature rupture of membranes. PLoS One. 2014; 9: e83338. DOI: 10.1371/journal.pone.0083338
  23. Lee J., Romero R., Kim S. et al. A new anti-microbial combination prolongs the latency period, reduces acute histologic chorioamnionitis as well as funisitis, and improves neonatal outcomes in preterm PROM. J Matern Fetal Neonatal Med. 2016; 29 (5): 707–20. DOI: 10.3109/14767058.2015.1020293
  24. Nutten S., Schumann A., Donnicola D. et al. Antibiotic administration early in life impaires specific humoral responses to an oral antigen and increases intestinal mast cell numbers and mediators concentrations. Clin Vaccine Immunol. 2007; 14 (2): 190-7. DOI: 10.1128/CVI.00055-06
  25. Mulder I., Schmidt B., Lewis M. et al. Restricting microbial exposure in early life negates the immune benefits associated with gut colonization in environments of high microbial diversity. PLoS One. 2011; 6 (12): e28279-e89. DOI: 10.1371/journal.pone.0028279
  26. Gueimonde M., Sakata S., Kalliomaki M. et al. Effect of maternal consumption of lactobacillus GG on transfer and establishment of fecal bifidobacterial microbiota in neonates. JPGN. 2006; 42 (2): 166–70. DOI: 10.1097/01.mpg.0000189346.25172.fd
  27. Pelucchi C., Chatenoud L., Turati F. et al. Probiotics supplementation during pregnancy or infancy for the prevention of atopic dermatitis: a meta-analysis. Epidemiology. 2012; 23 (3): 402–14. DOI: 10.1097/EDE.0b013e31824d5da2
  28. Kuitunen M., Kukkonen A.K., Savilahti E. Impact of maternal allergy and use of probiotics during pregnancy on breast milk cytokines and food antibodies and development of allergy in children until 5 years. Int Arch Allergy Immunol. 2012; 159 (2): 162–70. DOI: 10.1159/000336157
  29. Elias J., Bozzo P., Einarson A. Are probiotics safe for use during pregnancy and lactation? Can Fam Phisician. 2011; 57 (3): 299–301.
  30. Honma N., Ohtani К., Kikuchi Н. On effect of lactic acid bacteria. Part II. Clinical effects. New Med Clin. 1987; 36 (1): 75–80
  31. Honma N. On effects of lactic acid bacteria. Part I. Biological significance. New Med Clin. 1986; 35: 2687–95.
  32. Ohno H., Tsunemine S., Isa Y. et al. Oral administration of Bifidobacterium bifi dum G9-1 suppresses total and antigen specifi c immunoglobulin E production in mice. Biol Pharm Bull. 2005; 28 (8): 1462–6. DOI: 10.1248/bpb.28.1462
  33. Olivares M., Diaz-Ropero M.P., Gomez N. et al. The consumption of two new probiotic strains, Lactobacillus gasseri CECT 5714 and Lactobacillus coryniformis CECT 5711, boosts the immune system of healthy humans. Int Microbiol. 2006; 9 (1): 47-52
  34. Martinez-Canavate A., Sierra S., Lara-Villoslada F. et al. A probiotic dairy product containing L. gasseri CECT5714 and L. coryniformis CECT5711 induces immunological changes in children suff ering from allergy. Pediatr Allergy Immunol. 2009; 20 (6): 592–600. DOI: 10.1111/j.1399-3038.2008.00833.x
  35. Hammer H.F. Colonic hydrogen absorption: quantification of its effect on hydrogen accumulation caused by bacterial fermentation of carbohydrates. Gut. 1993; 34 (6): 818–22. DOI: 10.1136/gut.34.6.818